檢測水中藻類的方法主要有三種：
1.?藻類檢測和計數(shù)新方法——置式顯微鏡法；
2.?改進的水中藻類檢測方法；
3.藻類葉綠素及其降解產(chǎn)物的測定方法。
1、藻類檢測和計數(shù)新方法——置式顯微鏡法
由于環(huán)境污染，一些湖泊富營養(yǎng)化程度不斷加劇，導致水中藻類的快速增長。大量藻類的存在，直接影響了自來水的生產(chǎn)和供應(yīng)。為了了解藻類對水廠各工藝環(huán)節(jié)的影響，以湖泊水為水源的許多水廠都相繼開展了藻類計數(shù)檢測項目。國內(nèi)普遍采用的方法是將1L水樣加魯戈試劑固定在一個容器中，自然沉降24h后，利用虹吸的方法吸去上清液，并濃縮定容到30～50mL，然后取1mL放入血球計數(shù)板，在正置式顯微鏡下進行鏡檢計數(shù)[1]。此方法由于所需的水樣較多（1L），在需要采集多個水樣時，采集和運送的工作量大;在沉樣時還要多次沖洗轉(zhuǎn)移，增加了產(chǎn)生誤差的機會，而且操作不便。昆明自來水總公司的水源之一是富化程度較高的滇池水，因而昆明水司較早開展了此項目，并得到了瑞士蘇黎世供水局的技術(shù)支持和大力幫助。我們所采用的藻類計數(shù)方法的特點是使用倒置式顯微鏡，藻樣通過沉樣板一步沉降到位，與國內(nèi)普遍采用的方法相比具有準確快捷，水樣用量少，運送方便，無須多次沖洗轉(zhuǎn)移，操作簡單等優(yōu)點，適用于生產(chǎn)和科研檢測。
1.用品準備
（1）沉樣板。由一個長12cm，寬4.1cm,中央有圓形凹槽（底面積為5cm2）的長方形有機玻璃板和一個可滑動的、底部與凹槽形狀完全吻合的空心圓筒（容積為25mL）以及一塊圓形蓋玻片組成（見圖1），有機玻璃板的左側(cè)有一小孔，用于放掉上清液。
（2）倒置式顯微鏡。與普通倒置式顯微鏡不同的是，它的載物臺經(jīng)簡單改造，增加了一個長方形的金屬框，大小恰好可放置沉樣板。金屬框的作用是將沉樣板固定在載物臺上，使沉樣板可與載物臺同步移動，避免沉樣板發(fā)生偏移。兩個目鏡，一個裝有微型刻度尺，可直接測量藻類的大小和長度，另一個裝有“??”形標尺，在訐數(shù)時用它界定訐數(shù)范圍。
（3）250mL試劑瓶。用于盛裝水樣。
（4）移液管（1～25mL）。
2.藥品準備
①魯戈試劑（Lugols?Solution）;②福爾馬林（40%）;③灑精（50％）。
3.方法與步驟
3.1取樣
先在250mL試劑中加入6～7滴魯戈劑，再加入200mL，左右水樣，搖勻。如果水樣需保存較長時間，可加入適量福爾馬林（40％）。
3.2沉降
用移液管取適量水樣加入沉樣板，再加入蒸餾水至滿，加蓋圓玻片，靜沉24h。取多少水樣，同藻類的多寡而定，藻類數(shù)量多可少取，數(shù)量少可多取，一般水樣體積在1~25mL之間。
3.3計數(shù)
將沉樣板上的圓筒用蓋玻片推開，放掉上清液，置于顯微鏡上，以目鏡上的“工工”形標尺為界線，隨機選取若干條帶計數(shù)。
一般情況是這樣計數(shù)的；①在10×16倍鏡頭下，計數(shù)全部視野（1cm2）內(nèi)的大型藻類。②在×25的倍鏡下，隨機選取5條帶，計數(shù)基中的中型藻類。③在10×40倍的鏡頭下，隨機選取1條帶，計數(shù)其中的微型藻類。
在實際運用中，可根據(jù)當?shù)氐脑孱惽闆r，確定所選取的條帶數(shù)。
3.4計算
N=?
式中N?——1mL;
5——沉樣板板底部圓形凹槽的底面積，cm2;
S——每個計數(shù)條帶的面積，cm2;
A——選取的條帶數(shù)；
V——水樣體積；mL;
N——實際數(shù)的A個條帶的藻類個數(shù)。
將上述三個放大倍數(shù)下計數(shù)得的藻類依上式分別計算，再相加，即得到藻類總數(shù)。
3.5清洗
計數(shù)完畢，用蒸留水沖洗沉樣板，浸泡于50％的酒精中過認，再次用蒸留水沖洗后，晾干待用。
4.注意事項
（1）沉樣前，要將水樣搖勻
（2）將沉樣板的圓筒推開時，要防止產(chǎn)生氣泡。
（3）將沉樣板置于顯微鏡上時，要盡量保持平衡，避免藻類向一側(cè)傾斜。
（4）在選取計條帶時，既要注意隨機性，又要注意均勻性。
5.實際樣品檢測
取某水廠原水用上述方法（簡稱倒置法）和國內(nèi)普遍采用的傳統(tǒng)方法（簡稱正置法）分別進行藻類檢測和計數(shù)，結(jié)果見表1。
由表1可見，倒置法水樣用量少，并有較高的精密度；正置法水樣用量多，精密度較低，而且由于正置法使用的血球計數(shù)的容積所限（0.1m3），出現(xiàn)在計數(shù)框內(nèi)的藻類種類也有限，如果需要分類計數(shù)，有一定局限性，不好操作。倒置法可以一邊分類鑒定，一邊分類計數(shù)，水樣中存在的種類在1cm2的計數(shù)范圍內(nèi)基本都能看到，分類鑒定和計數(shù)的結(jié)果比較全面，操作也方便。另外，倒置法將水樣一步沉降到位，省略了許多中間環(huán)節(jié)，減少了多次沖洗?轉(zhuǎn)移帶來的操作誤差，從而提高了準確度。
6結(jié)論
利用倒置式顯微鏡進行藻類檢測和計數(shù)的方法，比使用正置式顯微鏡的血球計數(shù)板法水樣用量少，中間環(huán)節(jié)少，準確快捷，精密度較高，在分類鑒定和計數(shù)時，操作較為方便。但該方法使用的沉樣板國內(nèi)尚無廠家生產(chǎn)，需要從國外購買。
二、改進的水中藻類檢測方法
水中藻類傳統(tǒng)的測定方法是將一定量的水樣加魯哥試劑因定，在筒型分液漏斗中進行自然沉淀，48h后，借助虹吸方法吸去上層清液，按要求濃縮定容到30—50ml，然后在鏡下計數(shù)，由于固定沉降時間較長，檢測結(jié)果常滯后于生產(chǎn)和研究，影響了及時分析和解決問題。為了解決這一問題，下文對傳統(tǒng)的檢測蚊法中的沉淀濃縮進行了改進，摸索出一種快速測定藻類的方法，測定時間縮至當天即可出結(jié)果，而且準確、可靠，適用于生產(chǎn)和科研檢測。
1測定原理
利用測大腸菌的抽濾裝置，對檢測水樣進行抽濾，藻類被截留在濾膜（0.35—0.65μm）上，利用濾膜對藻細胞的吸附力并不強，用少量純水在HJ-3型電磁攪拌器上萃取4、5次就能將全部的藻細胞洗回水中。
濾膜的主要成分是硝化纖維素（CN）,可深于丙酮，而丙酮對藻細胞形狀基本沒影響，當濾膜遇到丙酮后會變成透明膠液，不影響鏡下觀察檢測。
由于丙酮易揮發(fā)，濾膜變干會恢復原型，為了保證藻細胞和濾膜的濕度，考慮到丙酮和甘油的相容性，甘油的吸潮性及本身的油脂性，能使藻細胞和濾膜在較長的時間內(nèi)保持濕潤透明，因此，在丙酮溶劑中加了一定比例的甘油，但甘油太多，會影響濾膜的溶解。
2.實驗方法
2.1抽濾萃取法
取適量水樣，按100：1的量加魯哥試劑固定，在裝有濾膜的抽濾器上進行抽濾。取下濾膜，放到100ml的小燒杯里，有藻細胞的一面朝上，加5—8ml純水；調(diào)好電磁攪拌器轉(zhuǎn)速，使液體攪拌時不會向上濺出，將小燒杯放到攪拌器上轉(zhuǎn)1mim左右，取洗液。
加入純水5—8ml純水；重復上步聚；振洗5次，定空洗液至50ml，在顯微鏡下記數(shù)，計算公工：
N=[(A/Ac)×（Vs/V·Va）]×n
式中，N為每升原水樣中的浮游植物數(shù)量（個·J-1）；A為計數(shù)框的體積（ml）；n為計數(shù)所得藻類數(shù)目（個）。
2.2驗證法
將上述實驗洗凈后的濾膜放入一平面皿，在空調(diào)下或熱源邊（不要超過40℃）使濾膜稍干燥，將濾膜放一載玻片上，加二至四滴濾膜透明液，使膜完全溶解成透明膠液，蓋上蓋玻片，在CHK型顯微鏡下觀察。
此方法也可用來驗證傳統(tǒng)沉淀法中的棄液藻細胞流失情況。
3?結(jié)果及分析
取已知數(shù)量的小球藻9.643×105·1-1，按上述方法進行回收實驗，結(jié)果見表1，兩種方法在實際水樣中的應(yīng)用結(jié)果如表2所示。
傳統(tǒng)沉淀方法精確度低，平行樣相對偏關(guān)在+15％；測試時間較長，根據(jù)理論推算，最小的藻為沉時間需要60?，我們實驗靜置學時間為43H,常有一些較小的藻細胞隨棄液流失，而且在南方地區(qū)氣溫較高，藻細胞大都偏小，易發(fā)生流失現(xiàn)象，流失達30％以上。
抽濾萃取法能較好地阻止藻細胞流失，但由于濾敢太小，一般只能抽濾濁度10NTU以下的水，對于源水最多只能抽濾200ML左右的水量，太多則濾孔就會被堵?而難以達到抽濾效果，所以存在取水量較少，影響代表性，如有條件，濾膜孔徑可取在1.5－1.8M,對于低濁度的出廠水和濾后水，則不存在這個問題，可抽濾200－300ml水量，而且能準確地反映水中殘存藻細胞的數(shù)量。
傳統(tǒng)的沉淀方法中由于染色時間較長，藻細胞和雜質(zhì)均被染成褐色，在鏡下觀察時，影響藻細胞的分?而抽濾萃取則沒有這種問題，因為藻細胞還保存著很好的原本色澤（絕大多數(shù)為綠色）和形狀，較容易與水中的細菌、真菌以及低等浮游動物、顆粒、纖維等區(qū)分開來。
3、藻類葉綠素及其降解產(chǎn)物的測定方法
下文綜述了用分光光度法,熒光檢測法及高效液相色譜法測定藻類葉綠素及其降解產(chǎn)物的方法.?分別詳細介紹了各種方法的設(shè)備,程序,計算公式及特點.。此外,還介紹了藻類類胡蘿卜素的高效液相色譜測定方法。?按測定方法分為六個部分：(1)?葉綠素a?,?b?和c?的分光光度法測定(三色法)?;?(2)?葉綠素a?的熒光檢測法;?(3)?存在脫鎂葉綠素a?時葉綠素a?的分光光度法測定;?(4)?存在脫鎂葉綠素a?時葉綠素a?的熒光法測定;?(5)?高效液相色譜(HPLC)?測定藻類的葉綠素及它們的降解產(chǎn)物;?(6)?HPLC?測定藻類葉綠素及類胡蘿卜素。
藻類的特異性色素是葉綠素、葉黃素和胡蘿卜素.?浮游藻類里常見的三種葉綠素是葉綠素a?,b?和c.葉綠素a?在一切浮游藻類里大約占有機物干重的1～2?%?,是估計藻類生物量的好指標.?細胞的葉綠素含量隨種類或類群而有所不同,同時還受年齡、生長率、光和營養(yǎng)條件的影響.脫鎂葉綠素a?(一種葉綠素a?的普通降解產(chǎn)物)?能夠干擾葉綠素a?的測定,因為如果存在脫鎂葉綠素a?,它能在葉綠素a?的相同光譜區(qū)吸收光和熒光,造成葉綠素a?值的誤差.?當測定葉綠素a?的時候還要測定脫鎂葉綠素a.?葉綠素a?和脫鎂葉綠素a?之比可作為浮游植物生理條件的一個良好指標.下文綜述了用分光光度法,熒光檢測法及高效液相色譜法測定藻類葉綠素及其降解產(chǎn)物的方法：
(1)?葉綠素a?,?b?和c?的分光光度法測定(三色法)?;
(2)?葉綠素a?的熒光檢測法;?
(3)?存在脫鎂葉綠素a時,葉綠素a?的分光光度法測定;?
(4)?存在脫鎂葉綠素a?時葉綠素a?的熒光法測定;?
(5)?高效液相色譜測定藻類的葉綠素及它們的降解產(chǎn)物;?(6)?HPLC?測定藻類葉綠素及類胡蘿卜素.
1?葉綠素a?,?b?和c?的分光光度法測定(三色法)
用丙酮水溶液自浮游生物濃縮樣萃取色素,用分光光度計測定萃取物的吸光度.?葉綠素自細胞內(nèi)提出的難度,不同藻類差異相當大.?為了將色素完全萃出,通常需要用組織研磨器機械的破壞細胞.
111? 儀器和試劑
(1)?分光光度計:用窄帶的(015～210nm)?.
(2)?1cm?,4cm?和10cm?光程的比色池.
(3)?醫(yī)用離心機.
(4)?組織研磨器(最好使用圓底的研磨管和搗桿)?.
(5)?離心管:15ml?,有刻度和螺帽.
(6)?過濾設(shè)備:過濾器,濾膜(0145μm?孔徑,47mm?直徑)?或玻璃纖維過濾器(GFPC?或GFPA?,415cm?直徑)?,真空泵.
(7)MgCO3?懸浮液:在100ml?蒸餾水中加入110g?細粉末MgCO3?.
(8)?90?%(體積比)?丙酮水溶液.
112? 測定程序
(1)?離心或過濾濃縮水樣.?在離心前或過濾的最后一步加入012ml?MgCO3?懸浮液.
(2)?把樣品置入組織研磨器,用2～3ml?90?%丙酮水溶液覆蓋浸泡.
(3)?把樣品移入一個有螺帽的離心管,用幾毫升90?%丙酮水溶液洗研磨器,并把洗液加入到萃取液
中,用90?%丙酮水溶液調(diào)節(jié)體積到5～10ml?.
(4)?在蓋緊的離心管中于500g?離心20min?澄清萃取液,把澄清的萃取液傾入一支清潔的,標定過的15ml?有螺帽的離心管并測定萃取液的總體積.
(5)?把萃取液移入1cm?的比色池,在750、663、645?和630nm?測定吸光度(OD)?.
113? 計算
葉綠素a?,b?和c?的測定分別使用663、645?和630nm?的吸光度.?750?nm?的讀數(shù)用來校正渾濁度.?將每個色素的OD?值中減去這個渾濁度校正值后,帶入下列公式計算濃度:
(1)?葉綠素a?(mgPl)?=?11164?(OD663?)?–?2116?(OD645?)?+?0110?(OD630?)
葉綠素b?(mgPl)?=?20197?(OD645?)?–?3194?(OD663?)?–?3166?(OD630?)
葉綠素c?(mgPl?)?=?54122?(OD630?)?–?14118?(OD645?)?–?5153?(OD663?)
(2)?各單位體積色素量的計算如下:
葉綠素a?(mgPm3?)?=?葉綠素a?(mgPl?)?×萃取液的總體積(l)?/?水樣體積(m3?)
2?葉綠素a?的熒光檢測法
葉綠素a?的熒光檢測法比分光光度法靈敏,需樣品較少.?而且不要求像分光光度法那樣的波長分辨率,在430nm?的激發(fā)波長和在663nm?的發(fā)射波長抽取在試管內(nèi)測定葉綠素a?可過的最佳靈感度.
211? 儀器和試劑
(1)?熒光計,備有高強度F4?T.?5?藍光燈,光電倍增管R?–?136?(紅敏)?,可滑動窗孔,光發(fā)射(CS?–?2?–?64)
和光激發(fā)(CS?–?5?–?60)?濾光片,以及一個高靈敏度門.
(2)?其他設(shè)備和試劑同111
212? 測定程序
(1)? 用已知濃度的葉綠素溶液標定熒光計:
用分光光度法測定濃度約為2、6、20?和60μgPl?的葉綠素a?萃取液,再在每一靈敏度位置對每一溶液進行讀數(shù),導出標定系數(shù)Fs
Fs?=?CaPRs
式中 Fs?———靈敏度位置S?的標定系數(shù)
Rs?———靈敏度位置S?的熒光計讀數(shù)
Ca?———分光光度法測定的葉綠素a?濃度(μgPl)
(2)? 在能夠取得適中讀數(shù)的各靈敏度位置測定樣品的熒光,將讀數(shù)乘以適當?shù)臉硕ㄏ禂?shù),得到葉綠素a?濃度..
3? 存在脫鎂葉綠素a?時葉綠素a?的分光光度法測定
由于脫鎂葉綠素在接近葉綠素a?相同的波長上有吸收,因而含有脫鎂葉綠素時葉綠素a?的測定值可能偏高.?葉綠素a?由于酸化作用變成脫鎂葉綠素a?,吸收峰的值比原來大約降低40?%?,并從663nm?移至665nm?,酸化前后產(chǎn)生的吸收峰之比為1170?,可用來表觀葉綠素a?的濃度作脫鎂葉綠素a?的校正.
311? 儀器和試劑
(1)?同111
(2)?HCl?1mol·L?–?1
312? 測定程序
(1)?用90?%丙酮水溶液萃取色素,離心澄清,在750、663nm?讀取OD?值.
(2)?在1cm?的比色池中用兩滴1mol·L?–?1?HCl?酸化萃取液,輕輕攪拌1～2min?后在750、665nm?讀取OD?值.
(3)?酸化前OD663和酸化后OD665值都減去OD750值.
313? 計算
使用校正過的值計算葉綠素a?濃度(C)?與脫鎂葉綠素a?濃度(P)
C(mgPm3?)?=?26173?(663b?–?665a)V1PV2L
P(mgPm3?)?=?26173[117?(665a)?–?663b?]V1PV2L
式中V1?———萃取液的體積(l)
V2?———水樣的體積(m3?)
L?———比色皿液層厚度(cm)
663b?,665a?分別為酸化前后90?%丙酮水溶液萃取的吸光度.
26173?是吸光度校正
4?存在脫鎂葉綠素a?時葉綠素a?的熒光法測定
用熒光法測定脫鎂葉綠素a?的濃度,需要測定酸化前后丙酮萃取液的熒光.?葉綠素a?由于酸化后變成脫鎂葉綠素a?,致使熒光降低,利用這一原理進行測定萃取液的脫鎂葉綠素a?濃度.
411? 儀器和試劑
(1)?同21a
(2)?HCl?1mol·L?–?1
(3)?純?nèi)~綠素a
412? 測定程序
校準熒光計,在每一靈敏度位置測定酸化前后萃取液的熒光.?計算校準系數(shù)(Fs?)?,用酸化前的熒光讀數(shù)除以酸化后的熒光讀數(shù),算出酸化前后的熒光比.
413? 計算
葉綠素a?(mgPm3?)?=?Fs?(Rb?–?Ra)?rP(r?–?1)
脫鎂葉綠素a?(mgPm3?)?=?Fs?(rRa?–?Rb)?rP(r?–?1)
式中 Fs?———靈敏度位置S?的換算系數(shù)
Rb?———萃取液酸化前的熒光
Ra?———萃取液酸化后的熒光
r?———RbPRa
5? 高效液相色譜測定藻類的葉綠素及它們的降解產(chǎn)物
511? 儀器和試劑
除色素提取物外還包括:
(1)?高效液相色譜儀,流速為210mlPm.
(2)?裝有100?微升進樣環(huán)管的高壓進樣閥.
(3)?保護柱(410?3?015cm?,?C18?,?3μm)
(4)?反相HPLC?柱(C18?,?10cm?,?3μm)
(5)?熒光檢測器,波長為430?±30nm?,可發(fā)射超過600nm?熒光.
(6)?數(shù)據(jù)紀錄裝置,長條紙記錄器或電子積分儀.
(7)?注射器,玻璃,250μL
(8)?HPLC?洗脫劑:洗脫劑A(80∶15∶5?;甲醇∶Ⅰ型試劑∶離子對溶液)?,洗脫劑B(80∶20?;甲醇∶丙酮)?.
(9)?校準標準物:分別將1ml?純?nèi)~綠素a?和b?溶于100ml?90?%丙酮中,用分光光度法測定其準確濃度.?用上述葉綠素a?和b?標準物經(jīng)鹽酸酸化后制得脫鎂葉綠素a?+?a′和b?+?b′標準物;從硅藻中萃取葉綠素c?和脫植基葉綠素a?,酸化脫植基葉綠素a?制得脫鎂葉綠素酸a?,分別用薄層色譜法(TLC)?純化,分光光度法校準,作為標準物.
512? 測定程序
(1)?用洗脫劑A?,流速為210mlPm?,建立和平衡HPLC?系統(tǒng);校準熒光計的感光度,用葉綠素a?標樣的濃度最大值作為滿刻度.
(2)?通過先前制備的標準物校準HPLC?系統(tǒng)的工作標準.?分別混合葉綠素與脫植基葉綠素a?,脫鎂葉綠素a?和脫鎂葉綠素酸a?,作為混合標準物.?混合1ml?標準液與300μL?離子對溶液,平衡5?分鐘后進樣.?混合1ml?90?%丙酮與300μL?離子對溶液作為空白液.?用150μL?標準液漂洗注射器2?次,注射器中吸入250μL?標準液用于進樣,將注射器插入進樣閥,充滿100μL?的進樣環(huán)管.?建立標準色素濃度與熒光峰面積(或高)?的標準曲線.
(3)?混合1ml?90?%丙酮色素提取物與300μL?離子對溶液,作為進樣樣品.
(4)?使用兩步溶劑程序,用于優(yōu)化葉綠素及其降解產(chǎn)物的分離.?進樣后,5?分鐘內(nèi)將洗脫劑A?轉(zhuǎn)變?yōu)橄疵搫?/span>B?,維持B15?分鐘,流速為210mlPm.?在下一次進樣前,需用洗脫劑A?重新平衡色譜柱5?分鐘.?總分析時間約為25?分鐘.
(5)?用下列公式計算各色素的濃度
Ci?=?AsFiVe
PVEVs
式中 Ci?=?各色素的濃度mgPl
As?=?各次進樣的色素峰面積
Fi?=?標準響應(yīng)因子
Ve?=?進樣體積(011ml)
VE?=?萃取體積(ml)
Vs?=?樣品體積(l)
(6)?這種方法僅用于葉綠素及其降解產(chǎn)物的定量.
(7)?檢測限隨熒光計結(jié)構(gòu)與流速而變,但對于大多數(shù)葉綠素與它們的降解產(chǎn)物來說,每次進樣檢測限范圍在10～100pg.?HPLC?法的精確度主要取決于色素標準樣的純度.?更理想的方法是測定標準樣的吸收光譜(350～750nm)?并與文獻數(shù)據(jù)相比較.?色素的純度也可用HPLC?法來測定,條件是不存在能與標準物的吸收和熒光譜帶相重疊的共洗脫污染物.?如果分光光度法測得的數(shù)據(jù)經(jīng)脫鎂色素校正,HPLC?的結(jié)
果表達為色素當量(例如:葉綠素a?當量=?脫植基葉綠素a?+?葉綠素a?+?葉綠素a′,假定使用正確的分子量校正值)?,那么HPLC?法與分光光度法提供的色素濃度與提供的EPA?標準符合得很好.?因此如果明顯的存在色素衍生物,用分光光度法測得的數(shù)據(jù)會偏高.?要HPLC?法與熒光法測得的數(shù)據(jù)一致則取決于附加的葉綠素b?,c?和它們的衍生物.
6? HPLC?測定藻類葉綠素及類胡蘿卜素
611? 儀器和試劑
除色素提取物外還包括:
(1)?高效液相色譜泵,可進行三種不同溶劑的梯度輸出,流速為110mlPm.
(2)?裝有200?微升進樣環(huán)管的高壓進樣閥.
(3)?保護柱.?(50?3?416mm?,C18?,5μm)
(4)?封尾的反相色譜柱(250?3?416mm?,5μm?,C18?)?.
(5)?可變波長或過濾吸光度檢測器,帶有低體積流通池,檢測波長為436nm.
(6)?數(shù)據(jù)紀錄裝置.
(7)?注射器,玻璃,500μL
(8)?HPLC?洗脫劑:洗脫劑A(80∶20?;?甲醇∶015M乙酸銨,pH?712)?,洗脫劑B(90∶10?;乙腈∶水)?,洗脫劑C(乙酸乙酯)?.
(9)?校準標準物:葉綠素a?和b?,β,β2胡蘿卜素可購買.?其他色素標準物可用TLC?或制備級HPLC?從植物提取物種純化得到.?在校準HPLC?系統(tǒng)前,在專用溶劑中使用裝有單色器的分光光度計測定所有標準物的濃度.?使用公式:
Ci?=?1000?(Aλmax-?A750nm)PE1cmb
式中 Ci?=?各色素的濃度mgPl
A?=?特定波長下的吸光度
E?=?吸光系數(shù)lPgcm
b?=?比色池長度cm
612? 測定程序
(1)?用洗脫劑A?,流速為110?mlPm?,建立和平衡HPLC?系統(tǒng);
(2)?通過先前制備的標準物校準HPLC?系統(tǒng)的工作標準.?混合1ml?標準物與300μL?蒸餾水,搖動,平衡5?分鐘后進樣.?用300μL?標準液漂洗注射器2?次,注射器中吸入500μL?標準液用于進樣,將注射器插入進樣閥,充滿200μL?的進樣環(huán)管.?混合1ml?90?%丙酮與300μL?蒸餾水作為空白液.?建立標準色素濃度與熒光峰面積(或高)?的標準曲線.
(3)?混合1ml90?%丙酮色素提取物與300μL?蒸餾水,作為進樣樣品.
(4)?樣品進樣采用梯度程序用以優(yōu)化葉綠素及類胡蘿卜素的分離.
(5)?通過比較樣品峰與純標準物峰的保留時間來定性.
(6)?濃度的計算方法同512.?(5)
(7)?這種方法為葉綠素與類胡蘿卜素的分離而設(shè)計,同時也可以分離主要的葉綠素分解產(chǎn)物.?方法的精確度由測定三倍進樣的浮游植物群落和植物的提取物確定.?使用合適的內(nèi)標物可提高精確度.